Методы диагностики трихомонад и гонококков

Статьи

  • Опубликовано в: УРОГЕНИТАЛЬНЫЙ ТРИХОМОНИАЗПособие для врачей
    Санкт-Петербург — Великий Новгород, 2007
  • Принципы лабораторной диагностики мочеполового трихомониаза
  • 1. Лабораторные методы исследований
  • Материалом для паразитологических исследований у женщин служит отделяемое из цервикального канала, смыв из влагалища и осадок мочи; у мужчин — отделяемое из уретры, центрифугат свежевыпущенной мочи, секрет предстательной железы и эякулят.

Накануне обследования женщинам в течение суток не рекомендуется делать спринцеваний. Материал для анализа берется у них со слизистой заднего свода влагалища. В некоторых случаях исследуется отделяемое из цервикального канала.

Мужчинам перед обследованием предлагается в течение 3-4 ч воздерживаться от мочеиспусканий. Материал из уретры у них забирается с глубины 5-7 см специальным зондом или ложкой Фолькмана.

Исследуется также секрет предстательной железы и эякулят.

Если речь идет о хронической трихомонаднои инвазии, накануне исследования рекомендуется сделать провокацию гоновакциной, пирогеналом или неспецифическую (алкогольную).

1.1. Диагностика мочеполового трихомониаза

Диагностика мочеполового трихомониаза проводится путем микроскопии нативных препаратов, а также мазков, окрашенных метиленовым синим, по Романовскому-Гимзе и по модифицированному способу Грама. Для обнаружения трихомонад в нативных препаратах исследуется эякулят, секрет предстательной железы и осадок мочи у мужчин и смыв из влагалища у женщин.

Исследование нативных препаратов

Нативные препараты готовятся и исследуются сразу же после взятия материала. Если это невозможно, материал помещается в питательную среду, обеспечивающую кратковременное сохранение трихомонад, из расчета 1 мл исследуемого материала на 5 мл среды. Материал должен быть доставлен в лабораторию в теплом виде, сроки доставки материала не должны превышать 2 часов.

Для приготовления препарата на предметное стекло наносится капля теплого изотонического раствора хлорида натрия или раствора Рингера-Локка, с которой смешивается исследуемый материал. Взвесь накрывается покровным стеклом и микроскопируется при увеличении объектива 40 и окуляра 7 или 10.

При изучении нативного препарата особое внимание обращается на размеры и форму трихомонад, характер их движения, внутреннее содержимое клеток.

В типичных случаях трихомонады обнаруживаются в виде подвижных образований грушевидной, реже овальной формы, размером в среднем от 13 до 17мкм. Характер их движений толчкообразный. Иногда удается заметить движение свободных жгутиков.

Ядра трихомонад чаще не обнаруживаются или плохо различимы. Цитоплазма трихомонад обычно зернистая, чаще вакуолизирована.

Наиболее часто в настоящее время встречаются округлые или овальные, слабоподвижные или неподвижные (амастиготные) формы, которые следует отличать от лейкоцитов — сегментоядерных нейтрофилов, а также «голых ядер» эпителиоцитов и клеток молодого эпителия. В этом случае ведущими диагностическими критериями являются размеры трихомонад (чаще от 13 до 17 мкм), диффузная зернистость цитоплазмы, наличие в ней вакуолей, а также отсутствие хорошо различимого ядра.

Размеры лейкоцитов, имеющих округлую, реже овальную форму, как правило, не превышают 10 мкм. Цитоплазма лейкоцитов прозрачна, зернистость обычно не отмечается или слабо выражена. Сегментоядерные нейтрофилы обычно содержат хорошо различимое сегментированное ядро.

Голые ядра эпителиоцитов отличаются от трихомонад относительно толстой оболочкой (кариолеммой) и иным характером зернистости (отдельные глыбки хроматина). В клетках молодого эпителия, даже если они по размерам соответствуют трихомонадам и обладают зернистостью, всегда прослеживается четко различимое округлое или овальное ядро.

В некоторых случаях обнаруживаются амебоидные формы Т. vaginalis, длина тела которых достигала 30 мкм, а также атипично делящиеся (почкующиеся) клетки.

Основными дифференциально-диагностическими критериями, отличающими атипичных трихомонад от клеток эпителия и лейкоцитов, служат наличие в цитоплазме этих простейших выраженной зернистости и вакуолей, а также отсутствие хорошо различимого ядра.

Кроме того, они значительно крупнее, чем наиболее часто встречающиеся форменные элементы — сегментоядерные нейтрофилы.

По размеру такие трихомонады могут быть сопоставимы с моноцитами, которые, в отличие от них, имеют четко выраженное ядро и никогда не встречаются в значительных концентрациях (несколько клеток в каждом поле зрения). При отсутствии типичных форм клеток трихомонад диагноз трихомониаза может считаться лишь предположительным и должен подтверждаться другими методами.

Исследование нативных препаратов обычно сочетают с микроскопией окрашенных мазков при увеличении объектива 90 (масляная иммерсия) и окуляра 7 или 10. Исследование окрашенных мазков несколько повышает вероятность обнаружения трихомонад за счет учета не только подвижных, но и неподвижных клеток.

Кроме того, при просмотре окрашенных мазков лучше выявляется ряд вспомогательных признаков, которые косвенно указывают на наличие воспалительного процесса.

К ним относятся скопление лейкоцитов на клетках плоского эпителия или вокруг них; большое количество слизи в мазках, наличие безъядерных клеточных образований и «голых» ядер эпителиальных клеток в цервикальном отделяемом и др.

Окраска метиленовым синим

Готовится 1% водный раствор метиленового синего. Высушенный на воздухе мазок фиксируется в течение 3 мин 96% этиловым спиртом, высушивается, после чего на него наносили на 1 мин раствор метиленового синего. Оставшийся краситель осторожно смывается слабой струей холодной воды и мазок высушивается.

Трихомонады в препарате имеют округлую или овальную форму, с интенсивно окрашенными в синий цвет ядрами; цитоплазма клеток светло-синяя, с нежной сетчатой структурой, вакуоли — бесцветны.

Окраска по Романовскому-Гимзе

Высушенный на воздухе мазок фиксируется смесью Никифорова (абсолютный этиловый спирт и эфир в соотношении 1:1). Раствор краски Романовского (азур-эозин) перед употреблением разводится дистиллированной водой в соотношении 0,3 мл на 10 мл воды и пипеткой наносится на горизонтально расположенные препараты на 30-40 минут. Затем они быстро промываются водой и высушиваются.

В окрашенных препаратах трихомонады имеют эксцентрично расположенное овальное пурпурно-фиолетовое ядро. Цитоплазма клеток окрашивается в светло-синий цвет, вакуоли остаются бесцветными, оболочка клеток четко заметна.

Окраска по модифицированному способу Грама

Для окраски используются следующие реактивы:

  1. 1% раствор генцианвиолета (1 г генцианвиолета растворяется в 100 мл кипящей дистиллированной воды, полученный раствор пропускается в горячем виде через бумажный фильтр).
  2. Водный раствор Люголя (2 г калия йодида растворяется в 300 мл дистиллированной воды, к полученному раствору добавляется 1 г чистого йода, после чего раствор фильтруется через бумажный фильтр).
  3. 3,96% этиловый спирт.
  4. 1% водный раствор нейтрального красного (1 г нейтрального красного растворяется в 100 мл дистиллированной воды и пропускается через бумажный фильтр).

Препарат накрывается полоской фильтровальной бумаги и заливается раствором генцианвиолета на 1-2 мин, после чего бумага снимается, препарат осторожно промывается водопроводной водой и на несколько секунд заливается раствором Люголя (до почернения мазка).

Остаток раствора смывается, препарат обесцвечивается в 96% этиловом спирте до тех пор, пока с тонких участков препарата перестают стекать фиолетовые струйки.

После смывания спирта водой препарат сразу же докрашивается в течение 3 мин раствором нейтрального красного, затем тщательно промывается и высушивается.

При микроскопии окрашенных мазков ядра клеток Т. vaginalis окрашиваются в фиолетовый цвет, цитоплазма — в красно-оранжевый цвет разной интенсивности. Метод окраски по Граму позволяет также диагностировать гонорею. В некоторых случаях для подтверждения диагноза трихомониаза используется ПЦР и культуральный метод.

Культуральный метод

Для диагностики мочеполового трихомониаза многие авторы используют культуральный метод. Существует достаточно большое количество питательных сред для культивирования трихомонад: среды СКДС, СДС-199 (Васильев М. М.

и др., 1980; ЯцухаМ. В., 1982; Беднова В. Н. и др., 1981, 1982, 1985; Клименко Б. В., 1987, 2000), синтетическая среда Линстеда (Linstead D., 1981); среда Даймонда (Diamond L. S. 1987, 1995), среда «Vagicult» и др.

Нами Т. vaginalis выращивается на питательной среде СДС-199 М (Захаркив Ю. Ф. и др., 1998), которая имеет следующий состав:

  1. 100 мл солевого раствора (натрия хлорида 6,5 г, калия хлорида 0,14 г, кальция хлорида 0,12 г, натрия бикарбоната 0,2 г, 0,5 мл 0,2% раствора метиленового синего, дистиллированной воды до 1 л);
  2. 20 мл среды 199;
  3. 450 мг солянокислого цистеина;
  4. 30 мл сыворотки крови эмбрионов телят (без консерванта);
  5. 10 мл 20% раствора мальтозы;
  6. тиамина хлорида 5% и пиридоксина гидрохлорида 5% по 0,25 мл и аскорбиновой кислоты 5% — 0,5 мл на 100 мл среды;
  7. ампициллина натриевой соли 125 000 ЕД и гентамицина 40 000 ЕД на 100 мл среды.

Солевой раствор автоклавируется при 120°С в течение 30 минут, остальные ингредиенты добавляются стерильно после охлаждения среды. Антибиотики и витамины добавляются в питательную среду непосредственно перед использованием. Среда должна быть светло-зеленого цвета, прозрачной; показатель рН среды должен составлять 5,5-6,0.

Питательная среда объемом 4,5 мл помещается в стерильные пробирки и заливается слоем стерильного вазелинового масла толщиной 5 мм для создания анаэробных условий культивирования трихомонад. Посев производится пастеровской пипеткой путем помещения 0,5-1,0 мл исследуемого материала на дно пробирок.

Микроскопическое исследование производится через 48 и 96 часов после посева. При положительных результатах трихомонады дают придонный рост в виде плотного беловатого осадка, из которого пастеровской пипеткой берется материал для микроскопического исследования.

Читайте также:  Можно ли делить свечу виферон на 2 части для уменьшения дозировки?

2. Определение чувствительности Trichomonas vaginalis к метронидазолу

В 1962 году S. Squires and J. A. Fadzean для определения чувствительности Т. vaginalis предложили метод серийных разведений метронидазола в жидкой питательной среде в анаэробных условиях.

В качестве критерия оценки чувствительности они использовали минимальную ингибирующую концентрацию (MIC), под которой понимали наименьшую концентрацию препарата, вызывающую иммобилизацию у 100% клеток трихомонад. С помощью указанной методики авторам удалось показать, что все изученные ими штаммы Т.

vaginalis, выделенные от больных трихомониазом, были чувствительны к метронидазолу в диапазоне концентраций препарата от 0,25 до 1 мкг/мл.

В 90-х гг. появились работы, свидетельствующие о возникновении и распространении штаммов Т. vaginalis, устойчивых к значительно более высоким концентрациям метронидазола: 50 мкг/мл (Borchardt К. А. et al, 1995), 32 мкг/мл (Debbia E. A. et al.

, 1996) и даже 250 мкг/мл (Таги Meri I. Т. et al., 1999). Тогда же было обосновано положение о том, что чувствительными к действию метронидазола в анаэробных условиях штаммами Т.

vaginalis следует считать лишь те, для которых паразитоцидный эффект препарата наблюдается в концентрации более чем 15 мкг/мл (Muller M. et al., 1986, 1988; Тага Meri I. Т. et al., 1999). Процент резистентных к метронидазолу штаммов Т.

vaginalis, выделенных в эти годы от больных трихомониазом, колебался от 5% (Narcisi Е. М., Secor W. Е., 1996) до 20% (Du Bouchet L. et al., 1997).

2.1. Определение чувствительности Trichomonas vaginalis к антипротозойным препаратам in vitro при использовании критерия иммобилизации трихомонад

Чувствительность штаммов Т. vaginalis к метронидазолу определяется с помощью метода серийных разведений препарата в питательной среде СДС-199 М. При использовании критерия оценки чувствительности штаммы Т. vaginalis, используемые для исследования, должны содержать не менее 90% подвижных клеток.

Среда заливается по 4,0 мл в стерильные пробирки, затем в них вносится 0,5 мл раствора, содержащего разные концентрации метронидазола (или другого антипротозойного препарата): от 0,25 до 1000 мкг/мл (1 мг/мл).

После этого в пробирки вносится 0,5 мл культуры возбудителя с заранее определенной концентрацией клеток (кл./мл). Контролем служит среда без препарата.

Затем для создания анаэробных условий, необходимых для культивирования Т. vaginalis, в пробирки со средой вносится вазелиновое масло (толщина слоя — 0,5 мм).

Пробирки с исследуемым материалом инкубируются в термостате при t = 37°С. Учет результатов производится через 48 и 96 часов после посева.

Чувствительность трихомонад к метронидазолу оценивается путем определения минимальной ингибирующей концентрации (MIC), вызывающей иммобилизацию всех клеток Т. vaginalis. К лекарственно-устойчивым относятся штаммы, у которых иммобилизация обнаруживается при концентрациях метронидазола (или другого антипротозойного препарата), превышающих 15 мкг/мл.

2.2. Определение чувствительности Trichomonas vaginalis к антипротозойным средствам in vitro при использовании критерия лизиса трихомонад при терапевтически эффективных концентрациях препаратов

В связи с широким распространением штаммов Т.

vaginalis, устойчивых к метронидазолу, особенно среди больных хроническим мочеполовым трихомониазом, а также высокой частотой встречаемости амастиготных клеток, мы предлагаем оценивать чувствительность трихомонад к широкому спектру антипротозойных препаратов (производным 5-нитроимидазола пролонгированного типа действия (тинидазол, ниморазол, орнидазол и секнидазол), 4-аминохинолина (хлорохин, син. делагил) и нитрофурана (нифуратель, син. макмирор)) на основе оценки лизиса клеток трихомонад.

Чувствительность трихомонад оценивается при концентрациях препаратов, соответствующих терапевтически эффективным, т. е. создаваемым в сыворотке больного при пероральном назначении стандартных схем препарата.

Среда разливается по 700 мкл в стерильные пробирки «Эппендорф», а затем в них вносится 200 мкл раствора димексида (диметилсульфоксида), содержащего антипротозойный препарат в концентрации, в 5 раз превышающей терапевтически эффективную. В контрольную пробирку помещается только 200 мкл димексида.

Затем в пробирки осуществляется посев 100 мкл исследуемого материала. Учет результатов производится через 48 и 96 часов после посева.

К высокоустойчивым (RIII) относятся штаммы, концентрация клеток которых в опытных пробирках с антипротозойным препаратом составляла не менее 50% по сравнению с контролем; к умеренно устойчивым (RII) — от 25 до 50%, к низкоустойчивым (RI) — менее 25%.

Воздействие препарата считается оптимальным при лизисе всех клеток трихомонад; в этом случае штамм относится к чувствительным (S).

По нашему мнению, именно такой подход позволяет подобрать препарат или комбинацию препаратов для назначения рациональной схемы этиотропной терапии.

2.3. Определение чувствительности Trichomonas vaginalis к метронидазолу in vivo и текущий контроль эффективности этиотропной терапии

Определение чувствительности Т. vaginalis к метронидазолу in vivo проводится с помощью метода, основанного на установлении сроков исчезновения паразитов из исследуемого материала у больных трихомониазом на фоне этиотропной терапии.

Паразитологические исследования материала проводят на 1,3, 5 и 7-й дни с момента начала лечения. Лекарственно-чувствительными считаются штаммы, которые перестают выделяться от больных на 2-5-е сутки с момента начала этиотропной терапии.

УРОГЕНИТАЛЬНЫЙ ТРИХОМОНИАЗПособие для врачей
Санкт-Петербург — Великий Новгород, 2007

Лабораторная диагностика гонореи: проблемы и пути их решения

Гонорея — передаваемое половым путем инфекционное заболевание, вызванное гонококком (Neisseria gonorrhoeae). По данным ВОЗ [1, 2], ежегодно в мире регистрируют до 200 млн вновь заболевших гонореей.

В России после некоторого снижения заболеваемости в 90-е годы ХХ столетия вновь отмечено увеличение количества больных до 102,2 на 100 тыс. населения [3]. Высокие темпы роста заболеваемости гонореей одновременно были отмечены в Эстонии, Болгарии, Чехии и ряде других стран.

По данным литературы [4], в 2009 г. заболеваемость в странах, ведущих регистрацию гонореи, составила: в РФ — 48,1 на 100 тыс. населения, в США — 106 на 100 тыс. населения, в странах ЕС — 9,7 (от 27,6 в Великобритании до 1,0 в Греции) на 100 тыс. населения.

В США в год официально регистрируют около 300–350 тыс. новых случаев заболевания[5].

Общепризнано, что заболеваемость населения, по крайней мере, в 2 раза выше официально зарегистрированной, поскольку гонорея протекает бессимптомно у 3-5% инфицированных, а также в статистические отчеты могут не попадать больные от частных врачей [6].

Учитывая то, что постановка правильного диагноза при инфекциях, передаваемых половым путем (ИППП), в том числе при гонорее, напрямую зависит от качества лабораторной диагностики, нарушения алгоритма лабораторной диагностики, а также, зачастую, несоблюдение предписаний основных регламентирующих документов вносит свой вклад в эту проблему.

Согласно определителю Берджи (1997 г.), гонококк относится к семейству Neisseriacae, роду Neisseria, виду Neisseria gonorrhoeae (Определитель Берджи, 1997). Род Neisseria представлен несколькими видами: N. canis, N. cinerea, N. denitrificans, N. elongate, N. flavescens, N. gonorrhoeae, N.

lactamica, N. macacae, N. meningitides, N. mucosa, N. polysaccharea, N. sicca, N. subflava. Из перечисленных видов только два являются патогенными для человека — N. gonorrhoeae и N. meningitides. Патогенные микроорганизмы различных отделов урогенитального тракта представлены на рис. 1, а, б, в.

Рисунок 1. (а-в). Патогенные микроорганизмы и сапрофиты различных полых органов человека: патогенные микроорганизмы уретры (а), цервикального канала (б) и влагалища (в). Другие виды нейссерий относятся к группе условно-патогенных аэробных и факультативных анаэробных микроорганизмов, возбудителей гнойно-септических и оппортунистических заболеваний (Приказ Минздрава РФ №64 от 21.02.2000 «Об утверждении Номенклатуры клинических лабораторных исследований») [7]. Большинство нейссерий являются комменсалами, обитающими в ротоглотке и носоглотке. Neisseria spp. является нормальной микрофлорой уретры, полости рта и ротоглотки, а также носа и кожи (см. рис. 1, г, д).Рисунок 1. (г, д). Патогенные микроорганизмы и сапрофиты различных полых органов человека: сапрофиты уретры (г), рта и ротоглотки (д).

Биоматериалом для лабораторного обследования на гонококковую инфекцию является отделяемое из уретры, влагалища, шейки матки, из прямой кишки, глаз, глотки, секрет предстательной железы, моча, кровь.

Прием антибиотиков и местные процедуры прекращают за 10 дней до взятия материала на исследование. У женщин рекомендуется брать материал перед менструацией.

Перед взятием материала необходимо воздержаться от мочеиспускания в течение 3-4 ч и половых отношений, а также туалета наружных половых органов и спринцевания. Исследуемый материал не должен содержать примесей крови [8] .

Читайте также:  Врут ли электронные тонометры?

Гонорея, ДНК возбудителя (Neisseria gonorrhoeae, ПЦР) соскоб, кач. в Москве

Код 19.21.1. Соскоб

Приём материала

  • Можно сдать в отделении Гемотест
  • Можно сдать анализ дома

Метод исследования

Полимеразная цепная реакция в режиме реального времени

Формат представления результата

Качественный Подготовка к анализу Расшифровка и референсы Сдать анализ на дому

  • Ежегодное профилактическое обследование.
  • Дифференциальная диагностика острых и хронических инфекций мочеполовой системы.
  • Любые хирургические вмешательства со стороны мочеполовых органов, включая «малые операции» (выскабливание).
  • Нарушения менструального цикла.
  • Привычное невынашивание беременности.
  • Медицинский профилактический осмотр беременных женщин, представителей декретированных групп населения.
  • Реактивный артрит.
  • Бесплодие.
  • Контроль эффективности лечения гонококковой инфекции.

Исследование направлено на количественное определение ДНК возбудителя гонореи методом полимеразной цепной реакции в режиме реального времени. Используется для диагностики гонококковой инфекции и для профилактического обследования декретированных групп населения и беременных женщин.

Гонококк (Neisseria gonorrhoeae) — бактерия, которая преимущественно поражает мочеполовые органы. Также возможна гонорея прямой кишки, редко — глаз, глотки, миндалин, еще реже — генерализация инфекции.

  Половой путь передачи инфекции составляет 99%, однако гонококки сохраняют жизнеспособность в гное и слизи (пока не высохнет субстрат), что делает возможным и неполовое заражение.

В крови возбудитель погибает под влиянием бактерицидной активности сыворотки, поэтому генерализация инфекции происходит крайне редко.

Молекулярно-биологическое исследование, выполненное методом ПЦР, направлено на обнаружение специфических фрагментов ДНК N. Gonorrhoeae и позволяет дифференцировать гонорею с другими воспалительными заболеваниями мочеполовых органов со схожей клинической картиной, выявить асимптомные и малосимптомные формы заболевания, установить излеченность заболевания.

Клинические проявления гонококковой инфекции:

  • уретрит;
  • кольпит;
  • цервицит;
  • проктит;
  • фарингит;
  • ангина.

Дыхательные пути поражаются реже, чем половые. Инкубационный период у мужчин продолжается 2-15 дней, у женщин до 21 дня. Заболевание может протекать длительно и скрытно.

Но у большинства инфицированных наблюдается один или несколько симптомов:

  • выделения из половых органов гнойного характера;
  • боли при мочеиспускании;
  • зуд в области половых органов;
  • болезненные ощущения во время полового акта.

Отсутствие своевременной адекватной терапии ведёт к последствиям:

  • простатиту у мужчин;
  • воспалению маточных труб и яичников у женщин;
  • бесплодию.

Что ещё назначают с этим исследованием?

Важные замечания

Материал для исследования

Клиническим материалом для лабораторных исследований может быть:

  • у женщин: отделяемое (соскоб) уретры, цервикального канала, влагалища, нижнего отдела прямой кишки; при наличии показаний — отделяемое ротоглотки, больших вестибулярных и парауретральных желез, слизистой оболочки конъюнктивы глаз;
  • у мужчин: отделяемое (соскоб) уретры; при наличии показаний — отделяемое нижнего отдела прямой кишки, ротоглотки, слизистой оболочки конъюнктивы глаз;
  • у детей и у девушек, не имевших половых контактов: отделяемое уретры, задней ямки преддверия влагалища, нижнего отдела прямой кишки; при осмотре с использованием детских гинекологических зеркал — отделяемое цервикального канала, при наличии показаний — отделяемое ротоглотки, конъюнктивы.

Использованная литература

  1. Федеральные клинические рекомендации по ведению больных гонококковой инфекцией. — Москва, 2013.

  2. Клинические рекомендации по диагностике и лечению заболеваний, сопровождающихся патологическими выделениями из половых путей женщин. — Москва, 2019.

  3. Российское общество дерматовенерологов и косметологов федеральные клинические рекомендации по ведению больных гонококковой инфекцией. — Москва, 2015.

Другие названия этого исследования

  • Названия на английском языке
  • Gonorea,gonorreya
  • Названия на русском языке
  • возбудитель гонореи,Гонококк
  • Подготовка к исследованию
  • Противопоказания и ограничения

За 14 дней до проведения анализа на гонорею нужно перестать принимать антибиотики препаратов.

24 часа до забора материала необходимо воздержаться от половых контактов. При взятии соскоба из уретры рекомендовано воздержаться от мочеиспускания 3–4 часа.

При взятии соскоба из влагалища и канала шейки матки необходимо за 48 часов до процедуры отказаться от спринцевания и применения внутривлагалищных форм лекарств.

Анализ на гонорею у женщин не проводится во время менструации. Рекомендуется сдавать биоматериал ранее чем за 5 дней до начала менструации или через 5 дней после ее завершения.

Противопоказания и ограничения

Абсолютных противопоказаний нет.

Положительный результат:

  • инфицирование Neisseria gonorrhoeae.

Отрицательный результат:

  • в анализируемом образце биологического материала не найдено фрагментов ДНК, специфичных для Neisseria gonorrhoeae;
  • концентрация возбудителя в образце ниже границы чувствительности метода.

копий/10*5 эпителиальных клеток

Специфичность определения — 100%. Чувствительность определения — 100 копий ДНК Neisseria gonorrhoeae в образце.

  1. ЦЕНА ИССЛЕДОВАНИЯ
  2. 410 ₽
  3. ИТОГОВАЯ ЦЕНА
  4. 820 ₽

820 ₽ Добавить в корзину

820 ₽ Добавить в корзину

К началу страницы ↑

5.4. Исследование гонококка Нейссера и трихомонады

Больной, поступающий
в венерологическое отделение с диагнозом
сифилис, до начала лечения обследуется
на другие сопутствующие инфекции,
передающиеся половым путем, в первую
очередь на гонорею и трихомониаз.

Бактериологическое
исследование на гонококк Нейссера
является основным методом диагностики
гонореи. Для исследования на гонококк
необходимо получить отделяемое уретры,
цервикального канала и экскреты желез
мочеполового тракта. После предварительного
массажа уретры делается соскоб ложечкой
со слизистой ее передней части.

При
обследовании женщин отделяемое уретры
и цервикального канала наносится на
одно стекло, но разделено по полюсам
(различные по форме пятна – круглое и
продолговатое). Отделяемое мужской
уретры размазывается тонким слоем между
двумя предметными стеклами. Мазки
окрашиваются по методу Грама.

При
бактериоскопическом обнаружении триады
гонококка (диплококки, грамотрицательные,
расположенные внутри лейкоцитов и вне
их) диагноз гонореи подтверждается.
Однако, следует помнить, что отрицательные
результаты поиска гонококка не всегда
свидетельствуют
об отсутствии гонореи.

При наличии
клинических симптомов гонореи или ее
осложнений, а также в случаях передачи
заболевания половому партнеру необходимы
дополнительные методы обследования
(посев отделяемого на гонококк, постановка
реакции Борде-Жангу, повторное взятие
мазков после провокации и т. д.).

Для исследования
на трихомонады берутся пенистые выделения
из уретры или влагалища, смешиваются с
небольшим количеством теплого
физиологического раствора и немедленно
исследуются в сухой системе микроскопа
(объектив 40) между предметным и покровным
стеклом в обычном или темном поле зрения.

Лучшие результаты дает исследование
смыва уретры. Трихомонады могут быть
обнаружены при исследовании осадка
свежей мочи. Вагинальные трихомонады
крупнее лейкоцитов, имеют грушевидное
тело и передвигаются толчками. При
исследовании в темном поле у них хорошо
видны жгутики.

Применяются также методы
микроскопии окрашенных мазков по Граму
или метиленовым синим.

6. Высыпные элементы (эффлоресценции: на коже – экзантема, на слизистых – энатема)

Подразделяются
на первичные и вторичные.

6.1. Первичные морфологические элементы сыпи

Первичные,
появляются на нормальной коже как первое
проявление патологического процесса.

Для того, чтобы отличить один первичный
морфологический элемент от другого
необходимо анализировать следующие их
свойства: возвышается ли элемент над
поверхностью кожи, имеет ли полость,
какой след после себя оставляет (исчезает
бесследно или оставляет рубец).

Все 8
первичных элементов сыпи будут отличаться
друг от друга по одному или двум указанным
свойствам. О важности правильного
определения первичного морфологического
элемента сказано выше.

Следует добавить,
что неправильное определение первичного
высыпного элемента чревато роковой
диагностической ошибкой. Ниже приводятся
определения высыпных элементов. В
скобках дано латинское название, знание
которого облегчает понимание
дерматологической литературы.

Пятно (макула)
– изменение цвета (окраски) кожи. Над
поверхностью окружающей кожи не
возвышается, полость не имеет, оставляет
нестойкий след (вторичное пятно) или
исчезает бесследно.

В связи с определением
пятна, как элемента измененного цвета
(окраски) кожи, следует уяснить, что все
пятна являются пигментными образованиями.
Известно, что в организме человека, в
частности в коже, имеются так называемые
естественные пигменты, а также могут
присутствовать пигменты искусственные
(чужеродные).

Цвет кожи в норме обусловлен
естественными пигментами меланином и
гемоглобином. Меланин нахо­дится в
эпителиальном слое и вырабатывается
меланоцитами, гемоглобин циркулирует
по кровеносным сосудам ко­жи, образуя
сосудистые пятна.

Искусственные пигменты
самого разнообразного цвета попадают
в кожу насильствен­ным образом
(татуировки), либо иным способом. По
количеству пигмента пятна подразделяются
на гиперпиг­ментиро­ван­ные
(гиперхромные), гипо- и депигментированные
(ахромичные).

В целом пятнистые изменения
кожи, изме­нения ее окраски называют
дисхромиями. По названию пигмента
дисхромии могут быть меланиновые или
иные. Различают гемоглобиновые
интраваскулярные, или просто сосудистые;
гемоглобиновые экстраваскулярные, или
геморрагические; меланиновые и
искусственные пятна.

а) гемоглобиновые
интраваскулярные (сосудистые) пятна
возникают от временного или стойкого
рас­ширения или спазма кровеносных
сосудов и связанной с этим гиперемией
(полнокровием) или ишемией (малокровием).
При гиперемии пятна гиперпигментные
(гиперхромные), при ишемии – анемичные
(ахромичные) При диаскопии изменяют
окраску.

Читайте также:  Что делать если роддом не принимает роды

Цвет гемоглобиновых пятен
зависит от состояния гемоглобина.
Оксигемоглобиновые пятна имеют алый
цвет, карбоксигемоглобиновые – синюшный.
На практике чаще имеют место смешанные
пятна различных оттенков красного,
обусловленные артериально-венозной
(смешаной) гиперемией.

Полнокровие
(гиперемию) кожи можно на­блюдать при
нормальном состоянии органа и при
воспалении. Поэтому сосудистые
гиперемические (гиперхромные гемоглобиновые
интраваскулярные) пятна под­разделяются
на воспалительные и невоспалительные.

Гипергемоглобиновые воспалительные
пятна размером до 1-2 см в диаметре
называют розеолой (розочкой), пятна
большего размера (иногда не ограниченного)
– эритемой Невоспалительные гиперемические
пятна – телеангиоэктазии (по размеру
соответствуют розеоле) и сосудистые
невусы (соответствуют эритеме).

В
практической дерма­тологиии используется
понятие «эритема» стыдли­вости, что
не является точным, ибо наблюдают феномен
игры сосудов, связанной с функциональ­ным
расстройством вегетативной нервной
систе­мы, но не с воспалением.

б) гемоглобиновые
гиперхромные экстраваскулярные
(геморраги­ческие) пятна появляются
при выхождении эритроцитов (гемоглобина)
в дерму в результат увеличения
проницаемости сосудистой стенки или
ломкости сосудов.

При витропрессии не
исчезают, постепенно меняют окраску
от багрово-красной до буровато-зеленой
и желтой («цветут»), ибо гемо­глобин
за пределами сосудов в результате
биохи­мических превращений образует
пигменты- производные (в частности
гемосидерины, билирубин).

Мелкие округлые
геморрагические пятна (до 0,5 см в диаметре)
называются петехиями, более крупные
(до 2 см) – пурпурой, самые крупные, чаще
неправильной формы – экхимозами.
Линейные экхимозы – вибицес. Под
геморрагическими пятном может находиться
гематома – кровяная опухоль.

в) меланиновые
пятна: при избыточном отложении меланина
– гиперхромные, при отвутствии меланина
– ахромичные (лейкодерма). Гиперхромные
меланиновые пятна имеют различный цвет
от коричневого до черного. При витропрессии
цвет не меняют.

Следует подчеркнуть,
что все ахромичные (независимо от
названия пигмента) пятна белого цвета.
Для дифференциальной диагностики белых
пятен применяется метод потирания кожи.

Меланиновые ахромичные пятна остаются
при этом в неизменном виде, гемоглобиновые
ахромичные пятна при потирании приобретают
цвет нормальной кожи.

г) искусственные
пятна обусловлены поступлением в кожу
чужеродных ей красящих веществ, например,
при производстве татуировок или
поверхностном нанесении на кожу красящих
веществ (бриллиантовая зелень, фуксин,
губная помада и др.). Имеют разнообразный
цвет, зависящий от цвета искусственного
пигмента. Могут образовываться в процессе
профессиональной деятельности (например,
у шахтеров), имеют значение в косметологии
и подвержены моде.

Узелок (папула,
нодулюс)

– четко ограниченное, возвышающееся
над уровнем кожи, бесполостное образование,
исчезающее бесследно. Узелки величиной
от 0,1 см до 0,3 см – милиарные, до 0,5 см –
лентикулярные, более 0,5 см – нуммулярные.
Папулы размером более 2 см в диаметре
называют бляшками. Размер бляшки
неограничен.

Бляшка формируется или за
счет периферического роста одного
узелка, или за счет слияния нескольких
увеличивающихся в размере узелков. По
форме узелки могут быть круглыми,
шаровидными, полигональными, коническими,
с западением в центре. По цвету – от
окраски нормальной кожи до ярко-красного.
По консистенции – плотные, плотно-эластичные,
тестоватые.

Папулы образуются либо в
результате скопления в верхних слоях
дермы клеточного инфильтрата, либо за
счет гипертрофии (пролиферации) тканей
кожи (эпидермиса, соединительной ткани,
железистых образований). Гистологически
различают эпидермальные и
эпидермально-дермальные папулы.

Клинически иногда можно лишь
предположительно видеть разницу между
ними, что важно для дифференциальной
диагностики.

Бугорок
(туберкулум)

в начале своего развития имеет большое
сходство с узелком (величина, цвет,
консистенция), но отличается от папулы
тем, что при своем разрешении (с
изъязвлением или без него) всегда
оставляет рубец.

Бугорки образуются
при развитии в дерме очагов продуктивного
специфического воспаления. При этом
разрушается строма дермы и замещается
грубоволокнистой соединительной тканью.

Бугорки в отличие от папул возникают
лишь на ограниченных участках кожного
покрова, склонны к группировке и слиянию.

Узел (нодус)
– аналогичное бугорку бесполостное
образование, расположенное в подкожной
клетчатке и глубоких слоях дермы. Узлы
или возвышаются над уровнем кожи, или
определяются пальпацией.

Чаще всего
они являются следствием специфического
или неспецифического воспалительного
процесса (инфекционные гранулемы при
туберкулезе, сифилисе, лепре) или
новообразования. Узлы склонны к распаду
с образованием язв.

При своем разрешении
оставляют рубцы или не разрешаются,
сохраняясь до конца жизни.

Волдырь
(уртика-крапива)

– ограниченный отек сосочкового слоя
дермы, появляющийся в результате остро
возникающего расширения капилляров и
увеличения проницаемости их стенок.

Клинически волдыри представляют плоские,
возвышающиеся над уровнем кожи
образования, не имеющие полости, величиной
от 0,5 см и более (гигантские волдыри),
розового или белого цвета с гладкой
поверхностью, склонные к периферическому
росту. Возникновение волдырей связано
с чувством зуда.

Их отличает быстрое
возникновение, кратковременного
существование и быстрое бесследное
исчезновение.

Пузырек
(везикула)

– ограниченное, возвышающееся над кожей
полостное образование, величиной 0,5 мм
(микровезикулы) до 0,5 см, возникающее в
результате скопления жидкости в
эпидермисе (под роговым слоем, среди
шиповатых клеток) или субэпидермально.
Содержимое пузырька – серозное, иногда
с примесью крови. При своем разрешении
стойких следов на коже везикулы не
оставляют. Вторично могут инфицироваться
и напоминать пустулы (гнойнички).

Пузырь (булла)
– элемент аналогичный пузырьку, но
более крупного размера. Формируется
пузырь в эпидермисе или под эпидермисом
(интраэпидермальный либо субэпидермальный).

Интраэпидермальный пузырь может быть
следствием разрушения десмосом в
результате патогистологического
изменения в эпидермисе- акантолиза. На
месте пузыря остается эрозия.

После
заживления эрозии сохраняется некоторое
время вторичное пятно.

Гнойничок
(пустула)

– полостное образование с гнойным
содержимым, возвышающееся над поверхностью,
исчезающее бесследно (глубокие пустулы
могут оставить стойкой след).

Полость
гнойничка образуется в эпидермисе в
результате гибели эпителиальных клеток
чаще под влиянием действия на них
продуктов жизнедеятельности микробов,
например, стафилококков или стрептококков.
Чаще гнойнички приурочены к устьям
волосяных фолликулов или протокам
потовых желез. Такие пустулы называются
фолликулярными.

Пустулы не связанные
с фолликулами называют фликтенами
(флюктуирующие пустулы). Иногда пустулы
возникают из других полостных образований
(пузырьков и пузырей) в результате
присоединения вторичной пиококковой
инфекции.

Выявление трихомониаза у мужчин

  • Трихомониаз – заболевание, передающееся половым путем и провоцирующее инфицирование мочеполового канала у мужчин. Трихомониаз является самым распространенным недугом среди всех венерических болезней.

    Его возбудителем является Trichomonas vaginalis, которая относится к классу жгутиков простейших.

    Трихомониаз передается через незащищенный половой контакт с инфицированным партнером (генитальный, анальный, оральный), через белье и предметы личной гигиены больного (полотенце, мочалку, мыло).

    Особенности течения трихомониаза у мужчин

    Трихомониаз у мужчин может протекать совершенно бессимптомно, при этом, не доставляя особого дискомфорта инфицированному.

    Чем дольше микроорганизм паразитирует на слизистых мочеполовых органов, тем острее будут симптомы.

    Инкубационный период длится 2–4 недели, в течение которого трихомонады активно размножаются и распространяются по уретре к семенным протокам и простате. Симптоматика заболевания может быть следующей:

    • зуд в области гениталий;
    • неприятные или болезненные ощущения при мочеиспускании;
    • патологические пенистые выделение из уретры в виде слизи или гноя;
    • отечная реакция, покраснение крайней плоти и головки;
    • боль во время половых контактов;
    • примеси крови в моче или сперме.

    В большинстве случаев хроническое течение трихомониаза (больше 2 месяцев) осложняется развитием простатита и везикулита.

    Методы лабораторной диагностики трихомониаза у мужчин

    Трихомонады у мужчин выявить намного сложнее, чем у женщин. Это объясняется тем, что в уретре возбудители могут находиться в небольшом количестве и быть малоподвижными. Затрудняется ситуация еще и тем, что микроорганизмы могут скрываться и довольно долго не поддаются определению их наличия.

    При диагностировании заболевания доктор уролог проводит сбор анамнеза, выслушивает жалобы больного, выясняет возможные причины возникновения патологии (отсутствие постоянного партнера, незащищенные половые контакты). И на основании результатов лабораторных исследований назначается эффективная терапия.

    Основными методами лабораторной диагностики при подозрении на трихомониаз у мужчин являются:

    • Микроскопия – исследование мазка из уретры под микроскопом. Этот анализ следует проводить сразу же после взятия материала, поэтому присутствие лаборатории в клинике крайне важно.
    • Микробиологическое исследование – материал для исследования помещают в питательную для микроорганизмов среду с целью определения наличия как трихомонад, так и неспецифических инфекций.
    • ПЦР-диагностика – определяет ДНК возбудителя и с точностью в 96% его наличие;
    • Серологическое исследование – анализ венозной крови для определения антител к трихомонаде.

    А также могут быть назначены другие виды диагностики для исключения инфицирования органов мужской мочеполовой системы.

  • Оставьте комментарий

    Ваш e-mail не будет опубликован. Обязательные поля помечены *

    Adblock
    detector